一、材料准备
化学试剂
透明质酸甲基丙烯酰(HAMA,分子量50-100 kDa,如HyStem®-HY)
光引发剂(LAP,Lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate)
氟化油(如HFE 7500,含1% EA表面活性剂,FluoroSurfactant)
超纯水(电阻率≥18.2 MΩ·cm)
设备与耗材
微流控芯片(玻璃毛细管或PDMS芯片,通道尺寸100 μm)
注射泵(高精度双通道注射泵JSP-02-1B)
1 mL和5 mL 注射器
0.22 μm针式过滤器(亲水性)
疏水处理培养皿(硅烷化或商用产品)
405 nm紫外灯(光强10 mW/cm²)
二、溶液配制(避光操作)
4% HAMA水溶液(w/w)
称取0.04 g HAMA,加入0.96 g超纯水,避光磁力搅拌(4℃, 12 h)至完全溶解。
储存:4℃避光保存,有效期7天。
0.2% LAP水溶液(w/w)
称取0.01 g LAP,加入4.99 g超纯水,避光超声溶解(30 s脉冲,冰浴,重复3次)。
储存:分装后-20℃避光保存,避免反复冻融。
2% HAMA + 0.05% LAP工作液
取400 μL 4% HAMA + 100 μL 0.2% LAP + 500 μL超纯水,混合后避光过滤(0.22 μm)。
注意:最终浓度需验证(如粘度测定),避免气泡引入。
三、微流控液滴生成
芯片预处理
用氟化油冲洗芯片通道5 min(流速10 μL/min),排出气泡。
注射器装载
油相:5 mL氟化油(含1% EA表面活性剂)。
水相:1 mL HAMA-LAP工作液。
流速设置
油相:7.5 μL/min,水相:10 μL/min(流速比0.75,适用于100 μm通道)。
液滴生成步骤
启动注射泵,先注入油相至通道充满,再启动水相。
初始废液(约100 μL)用离心管接收,待流动稳定。
显微镜观察液滴均匀性(直径目标:80-120 μm),必要时调整流速(±10%)。
收集与固化
稳定后收集液滴至1.5 mL离心管(20 min,约200 μL水相)。
紫外固化:405 nm照射5 min(距离10 cm,冰浴避免过热)。
四、关键优化点与参考文献
HAMA浓度与交联
2% HAMA平衡可打印性与机械强度(参考:Burdick et al., Adv. Mater. 2013)。
LAP光引发效率
0.05% LAP在405 nm下5 min可充分交联(Fairbanks et al., Biomaterials 2009)。
微流控参数设计
流速比控制液滴尺寸(油相:水相=0.75-1.5),表面活性剂防止聚并(Zheng et al., Lab Chip 2017)。
五、故障排除
液滴不均:检查过滤器堵塞、流速校准或表面活性剂失效。
固化失败:确认紫外光强,避免氧抑制(可氮气吹扫)。
芯片堵塞:预过滤所有溶液,定期乙醇冲洗通道。
参考文献
Burdick, J. A., & Murphy, W. L. (2013). Nature Communications.
Fairbanks, B. D., et al. (2009). Biomaterials.
Zheng, Y., et al. (2017). Lab on a Chip.
以上实验方案仅供参考